Karboksysomy – organelle występujące u niektórych bakterii wiążących dwutlenek węgla (CO2), przeprowadzających fotosyntezę lub chemosyntezę. Wewnątrz struktur znajdują się enzymy odpowiedzialne za asymilację węgla. Do struktur tych aktywnie transportowane są jony wodorowęglanowe (HCO3−), które następnie ulegają przekształceniu do CO2 przez obecną w karboksysomach anhydrazę węglanową, w efekcie dochodzi do lokalnego wzrostu stężenia CO2 i zwiększenia wydajności reakcji karboksylacji przeprowadzanej przez enzym Rubisco. Reakcja karboksylacji jest reakcją ograniczającą zachodzenie cyklu Calvina. Karboksysomy mają kształt wielościanów o średnicy od 80 do 140 nm i zbudowane są z białka.
Struktury zostały znalezione u wszystkich sinic i wielu bakterii chemosyntetyzujących, u których dochodzi do asymilacji węgla.
Białka tworzące karboksysomy należą do szerszej grupy białek tworzących mikrokompartamenty o różnych funkcjach, lecz zbliżonej strukturze opartej na dwóch rodzinach białek budujących otoczkę.
Odkrycie
Karboksysomy zostały po raz pierwszy zaobserwowane w komórkach sinicy Phormidium uncinatum w roku 1956. Na początku lat sześćdziesiątych XX wieku podobne struktury zostały dostrzeżone także u innych sinic. Obserwowane obiekty zostały nazwane w roku 1961 "ciałkami wielościennymi", a w kolejnych latach odkryto ich istnienie również u niektórych bakterii chemoautotroficznych, wiążących dwutlenek węgla (np. Halothiobacillus, Acidithiobacillus, Nitrobacter oraz Nitrococcus).
Zostały wyizolowane i oczyszczone z Thiobacillus neapolitanus w roku 1973. Wtedy stwierdzono, że zawierają wewnątrz enzym Rubisco. Na podstawie badań ustalono, że organella biorą udział w asymilacji węgla, co stało się podstawa do nadania stosowanej nazwy.
Budowa
Karboksysomy mają kształt ikosaedru lub zbliżony, zwykle o średnicy 80-120 nm. Zewnętrzna otoczka składa się z kilku tysięcy podjednostek białkowych. Wewnątrz znajdują się enzymy odpowiedzialne za asymilację węgla – anhydraza węglanowa i Rubisco. Struktura otoczki białkowej została poznana dzięki rentgenografii strukturalnej. Główne białko tworzące otoczkę to cykliczny heksamer, tworzący ściany wielościanu. Niewielkie pory obecne w strukturze heksamerów umożliwiają wniknięcie do środka substratów (wodorowęglanu i rybulozo-1,5-bisfosforanu) oraz wyjście produktu (3-fosfoglicerynianu). Budowa porów zapewnia aktywny transport związków wymienianych przez organellum z otoczeniem. Wśród pozostałych komponentów otoczki znajdują się pentameryczne białka, które prawdopodobnie tworzą wierzchołki ikosaedru.
Podobnie jak karboksysomy z wielu białek heksamerycznych i pentamerycznych zbudowane są liczne kapsydy wirusów, nie jest jednak jasne, czy istnieje ewolucyjny związek pomiędzy budową karboksysomów i kapsydów wirusów. Badania struktury karboksysomów wykazały, że wewnątrz otoczki znajduje się około 250 cząsteczek Rubisco tworzących trzy lub cztery koncentryczne warstwy.
Badania na mutantach Halothiobacillus neapolitanus nieposiadających Rubisco wykazały, że puste otoczki zachowują kształt, co sugeruje iż biogeneza otoczki karboksysomu i wbudowanie enzymów są dwoma niezależnymi, ale funkcjonalnie połączonymi procesami. Doświadczenia wskazują, że o możliwości wbudowania Rubisco decyduje duża podjednostka enzymu.
Zobacz też
Przypisy
- ↑ Y. Tsai, MR. Sawaya, GC. Cannon, F. Cai i inni. Structural analysis of CsoS1A and the protein shell of the Halothiobacillus neapolitanus carboxysome.. „PLoS Biol”. 5 (6), s. e144, Jun 2007. DOI: 10.1371/journal.pbio.0050144. PMID: 17518518.
- ↑ MR. Badger, GD. Price. CO2 concentrating mechanisms in cyanobacteria: molecular components, their diversity and evolution.. „J Exp Bot”. 54 (383), s. 609-22, Feb 2003. PMID: 12554704.
- ↑ Władysław J.H. Kunicki- Goldfinger: Życie bakterii. Warszawa: Wydawnictwo Naukowe PWN, 1998. ISBN 978-83-01-14378-7.
- ↑ Jan Kopcewicz, Stanisław Lewak, Halina Gabryś: Fizjologia roślin. Warszawa: Wydawnictwo Naukowe PWN, 2002, s. 300-301. ISBN 83-01-13753-3.
- 1 2 3 TO. Yeates, CA. Kerfeld, S. Heinhorst, GC. Cannon i inni. Protein-based organelles in bacteria: carboxysomes and related microcompartments.. „Nat Rev Microbiol”. 6 (9), s. 681-91, Sep 2008. DOI: 10.1038/nrmicro1913. PMID: 18679172.
- ↑ GC. Cannon, CE. Bradburne, HC. Aldrich, SH. Baker i inni. Microcompartments in prokaryotes: carboxysomes and related polyhedra.. „Appl Environ Microbiol”. 67 (12), s. 5351-61, Dec 2001. DOI: 10.1128/AEM.67.12.5351-5361.2001. PMID: 11722879.
- ↑ G. DREWS, W. NIKLOWITZ. [Cytology of Cyanophycea. II. Centroplasm and granular inclusions of Phormidium uncinatum.]. „Arch Mikrobiol”. 24 (2), s. 147-62, 1956. PMID: 13327992.
- ↑ E. Gantt, SF. Conti. Ultrastructure of blue-green algae.. „J Bacteriol”. 97 (3), s. 1486-93, Mar 1969. PMID: 5776533.
- ↑ JM. Shively. Inclusion bodies of prokaryotes.. „Annu Rev Microbiol”. 28 (0), s. 167-87, 1974. DOI: 10.1146/annurev.mi.28.100174.001123. PMID: 4372937.
- ↑ JM. Shively, F. Ball, DH. Brown, RE. Saunders. Functional organelles in prokaryotes: polyhedral inclusions (carboxysomes) of Thiobacillus neapolitanus.. „Science”. 182 (112), s. 584-6, Nov 1973. PMID: 4355679.
- ↑ JM. Shively, FL. Ball, BW. Kline. Electron microscopy of the carboxysomes (polyhedral bodies) of Thiobacillus neapolitanus.. „J Bacteriol”. 116 (3), s. 1405-11, Dec 1973. PMID: 4127632.
- ↑ S. Tanaka, CA. Kerfeld, MR. Sawaya, F. Cai i inni. Atomic-level models of the bacterial carboxysome shell.. „Science”. 319 (5866), s. 1083-6, Feb 2008. DOI: 10.1126/science.1151458. PMID: 18292340.
- ↑ MF. Schmid, AM. Paredes, HA. Khant, F. Soyer i inni. Structure of Halothiobacillus neapolitanus carboxysomes by cryo-electron tomography.. „J Mol Biol”. 364 (3), s. 526-35, Dec 2006. DOI: 10.1016/j.jmb.2006.09.024. PMID: 17028023.
- ↑ CV. Iancu, HJ. Ding, DM. Morris, DP. Dias i inni. The structure of isolated Synechococcus strain WH8102 carboxysomes as revealed by electron cryotomography.. „J Mol Biol”. 372 (3), s. 764-73, Sep 2007. DOI: 10.1016/j.jmb.2007.06.059. PMID: 17669419.
- ↑ BB. Menon, Z. Dou, S. Heinhorst, JM. Shively i inni. Halothiobacillus neapolitanus carboxysomes sequester heterologous and chimeric RubisCO species.. „PLoS One”. 3 (10), s. e3570, 2008. DOI: 10.1371/journal.pone.0003570. PMID: 18974784.